CRISPR-Cas9 基因編輯技術(shù)的廣泛應(yīng)用，推動基因功能研究進入高通量時代。然而，傳統(tǒng)單細胞 CRISPR 篩選技術(shù)存在細胞分離效率低、數(shù)據(jù)分析周期長等問題，限制了全基因組篩選的大規(guī)模開展。Illumina 即將推出的高通量單細胞 CRISPR 制備技術(shù)，以 “粒子模板即時分區(qū)"（PIP）聚合物為核心，結(jié)合 NovaSeq X 測序儀與 DRAGEN 加速分析系統(tǒng)，實現(xiàn) 100 萬個細胞反應(yīng)規(guī)模的高效篩選，為基因編輯研究帶來革命性突破。
PIP 聚合物技術(shù)是該系統(tǒng)的核心創(chuàng)新點。傳統(tǒng)單細胞分離多采用微流控芯片技術(shù)，存在細胞堵塞、分離效率低（約 60-70%）的問題。PIP 聚合物通過特殊的多孔結(jié)構(gòu)，在微流控通道中形成獨立的 “粒子模板分區(qū)"，每個分區(qū)可精準捕獲單個細胞，分離效率提升至 95% 以上。同時，PIP 聚合物表面修飾的特異性抗體，能與細胞表面標志物結(jié)合，實現(xiàn)對特定細胞亞群的富集，例如在免疫細胞 CRISPR 篩選中，可針對性分離 T 細胞、B 細胞等，提高篩選的精準性。
在文庫構(gòu)建環(huán)節(jié)，該技術(shù)采用 “原位逆轉(zhuǎn)錄" 策略，將 CRISPR 向?qū)?RNA（gRNA）與細胞 mRNA 的捕獲、逆轉(zhuǎn)錄過程整合在同一分區(qū)內(nèi)，減少樣本損失。傳統(tǒng)文庫構(gòu)建需經(jīng)過多步轉(zhuǎn)移操作，樣本損失率可達 30-40%，而原位逆轉(zhuǎn)錄技術(shù)將損失率控制在 5% 以下，尤其適合稀有細胞樣本的篩選。此外，系統(tǒng)配備的 “gRNA 條形碼標記" 功能，為每個 gRNA 添加條形碼，可同時追蹤 10 萬個以上的 gRNA 靶點，實現(xiàn)大規(guī)?；蚓庉嬓Ч钠叫蟹治?。
測序與數(shù)據(jù)分析環(huán)節(jié)的協(xié)同優(yōu)化，進一步提升篩選效率。NovaSeq X 測序儀的高通量特性，可在 24 小時內(nèi)完成 100 萬個細胞樣本的測序，產(chǎn)生約 500Gb 的原始數(shù)據(jù)。DRAGEN 加速分析系統(tǒng)則通過硬件加速與算法優(yōu)化，將 gRNA 定位、基因編輯效率計算等分析步驟的時間縮短至 8 小時，相較于傳統(tǒng)生物信息學(xué)分析流程（約 48 小時），效率提升 5 倍。同時，DRAGEN 系統(tǒng)內(nèi)置的 “脫靶效應(yīng)分析" 模塊，可通過比對參考基因組，檢測 CRISPR 編輯過程中可能出現(xiàn)的脫靶位點，為基因編輯的安全性評估提供依據(jù)。
目前，該技術(shù)已在腫瘤耐藥基因篩選、信號通路解析等領(lǐng)域展開驗證。在腫瘤研究中，科研人員通過對 100 萬個癌細胞進行 CRISPR 篩選，成功鑒定出 30 余個與化療耐藥相關(guān)的基因，為開發(fā)逆轉(zhuǎn)耐藥的靶向藥物提供靶點；在干細胞研究中，該技術(shù)助力解析多能性維持相關(guān)基因的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)，為干細胞定向分化提供新策略。隨著技術(shù)的成熟，Illumina 高通量單細胞 CRISPR 制備技術(shù)有望成為基因功能研究的常規(guī)工具，推動基因編輯從 “靶向編輯" 向 “全景篩選" 邁進。
關(guān)鍵詞：Illumina 單細胞 CRISPR PIP 聚合物 DRAGEN 加速分析 全基因組篩選
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